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Un piccolo RNA di Pseudomonas aeruginosa regola l'infezione cronica e acuta

Jun 12, 2024

Natura volume 618, pagine 358–364 (2023) Citare questo articolo

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La capacità di passare da uno stile di vita all'altro consente ai batteri patogeni di prosperare in diverse nicchie ecologiche1,2. Tuttavia, manca una comprensione molecolare dei cambiamenti del loro stile di vita all’interno dell’ospite umano. Qui, esaminando direttamente l’espressione genica batterica in campioni di derivazione umana, scopriamo un gene che orchestra la transizione tra infezione cronica e acuta nel patogeno opportunista Pseudomonas aeruginosa. Il livello di espressione di questo gene, qui denominato sicX, è il più alto tra i geni di P. aeruginosa espressi nelle ferite umane croniche e nelle infezioni da fibrosi cistica, ma è espresso a livelli estremamente bassi durante la crescita standard di laboratorio. Mostriamo che sicX codifica un piccolo RNA che è fortemente indotto da condizioni di basso ossigeno e regola post-trascrizionalmente la biosintesi anaerobica dell'ubichinone. L'eliminazione di sicX provoca il passaggio di P. aeruginosa da uno stile di vita cronico a uno stile di vita acuto in diversi modelli di infezione nei mammiferi. In particolare, sicX è anche un biomarcatore di questa transizione da cronica ad acuta, poiché è il gene maggiormente sottoregolato quando un’infezione cronica viene dispersa per causare setticemia acuta. Questo lavoro risolve una questione vecchia di decenni riguardante le basi molecolari alla base del passaggio da cronico ad acuto in P. aeruginosa e suggerisce l’ossigeno come fattore ambientale primario della letalità acuta.

Molti batteri patogeni possono colonizzare i loro ospiti e persistere cronicamente. In alcuni casi, i batteri si diffondono dai siti iniziali dell’infezione ad altre parti del corpo, provocando malattie sistemiche acute. Una questione centrale in biologia è comprendere i meccanismi molecolari e i segnali ambientali che controllano questo cambiamento di stile di vita. Il patogeno umano opportunista P. aeruginosa può causare infezioni sia acute che croniche notoriamente difficili da trattare. P. aeruginosa esiste come singole cellule (stile di vita planctonico) o aggregati racchiusi in matrice (stile di vita del biofilm), che si ritiene favoriscano rispettivamente le infezioni acute e croniche. Pertanto, gli studi di laboratorio si sono tradizionalmente concentrati sull'indagine della transizione biofilm-planctonico di P. aeruginosa in vitro, con l'obiettivo di comprendere i cambiamenti nello stile di vita di questo patogeno negli esseri umani. Decenni di lavoro hanno dimostrato come i sistemi di regolamentazione globale come il secondo messaggero ciclico di-GMP3,4,5 e il sistema Gac-Rsm2,6,7,8,9,10,11,12 controllano la transizione biofilm-planctonico di P aeruginosa in vitro, fornendo approfondimenti critici sulla storia della vita di questo batterio. Tuttavia, finora, è rimasto sfuggente il modo in cui P. aeruginosa risponde ai segnali ambientali e di conseguenza cambia gli stili di vita infettivi all’interno del mammifero ospite. In questo studio, abbiamo colmato questa lacuna nella conoscenza sfruttando i trascrittomi di P. aeruginosa acquisiti da campioni di derivazione umana per scoprire e caratterizzare meccanicamente un nuovo piccolo RNA, chiamato sRNA induttore dell'infezione cronica X (SicX), che governa la malattia cronica di P. aeruginosa. o decisione acuta durante l'infezione dei mammiferi.

In precedenza abbiamo ottenuto trascrittomi di P. aeruginosa ad alta risoluzione da campioni di infezione umana, inclusi campioni di espettorato di pazienti con fibrosi cistica e campioni di sbrigliamento di pazienti con ferite croniche13,14. Utilizzando metodi di apprendimento automatico, abbiamo identificato 30 geni di P. aeruginosa i cui livelli di espressione differenziano collettivamente la crescita di P. aeruginosa negli esseri umani da quella in laboratorio13. Più della metà di questi geni non sono caratterizzati, evidenziando una sostanziale lacuna nella conoscenza della biologia dell’infezione umana da P. aeruginosa. Incluso in questi geni di funzione sconosciuta è PA1414 (locus tag nel ceppo di P. aeruginosa PAO1), il cui livello di espressione negli esseri umani era 222 volte superiore a quello in laboratorio, e il suo livello di espressione è il più alto tra i geni di P. aeruginosa espressi durante l'infezione umana (Fig. 1a). Successivamente abbiamo confrontato l'abbondanza relativa (trascrizioni per milione (TPM)) delle trascrizioni PA1414 con quelle di altre trascrizioni codificanti proteine ​​(5.893 geni) e non codificanti (199 sRNA) 15 (Fig. 1b). In media, le trascrizioni PA1414 rappresentavano il 13,85% del TPM nei trascrittomi di P. aeruginosa acquisiti da campioni di infezioni croniche umane e, in particolare, in alcuni casi costituivano quasi il 50% del TPM totale. Tuttavia, il livello di espressione di PA1414 era estremamente basso in P. aeruginosa coltivata in condizioni standard in vitro. PA1414 è un piccolo gene (lungo 234 paia di basi) dalla funzione sconosciuta. L'esame di 261 genomi completi di P. aeruginosa ha identificato 258 ortologi PA1414 (Fig. 1c e Dati estesi Fig. 1) e nessun omologo è stato identificato in altre specie di Pseudomonas o altri organismi. Le sequenze di DNA degli ortologi PA1414, comprese le loro regioni promotrici a monte, sono altamente conservate (Fig. 1d), suggerendo che PA1414 ha una funzione conservata e la regolazione della sua espressione è universale tra gli isolati di P. aeruginosa.

2, |log2[fold change]| > 1) for identifying differentially expressed genes. The upregulated (green) and downregulated (blue) genes in humans are colour-coded differently. Grey bubbles indicate genes that are not differentially expressed. b, Relative transcript abundance (TPM) of PA1414 compared to those of all other protein-coding sequences (CDSs) and non-coding sRNAs in 54 transcriptomes examined in a, sorted from the highest to the lowest PA1414 TPM. Average PA1414 TPM is indicated with dashed lines. c, PA1414 orthologues are found only in P. aeruginosa. Green and black bars indicate the presence and absence of orthologues, respectively. d, DNA sequence conservation of PA1414 and its neighbouring genes among 258 PA1414-containing P. aeruginosa isolates. Below, the percentage of orthologues identical to the PA1414 allele from PA14 at each nucleotide is shown./p> 103, PA1414 ranking < 102) for identifying transcriptomes with high PA1414 expression. b, β-galactosidase assay examining the induction of PA1414 under anaerobic and static conditions. PPA1414-lacZ, lacZ transcriptionally fused to PA1414 promoter; PPA1414*, PA1414 promoter containing mutations in the Anr-binding motif; MrT7, MAR2xT7 transposon. n ≥ 4 independent experiments. c, Northern blot analysis of PA1414 expression. Estimated size (nucleotides, nt) are indicated on the left. 5S rRNA served as a loading control. For gel source data, see Supplementary Fig. 1. d, Colony biofilm growth of ΔPA1414 and WT in different P. aeruginosa strain backgrounds. The presence and absence of oxygen are indicated. The CFU of ΔPA1414 was normalized against the CFU of the WT in each experiment (n = 4). A dashed line highlights the point where the CFU ratio = 1. e, Percentage of tetracycline-resistant (TetR) cells before and after daily passages under anaerobic conditions (n = 3). TetS, tetracycline sensitive; Δ, ΔPA1414. f, RNA-seq reads aligned to the PA1414 locus during standard in vitro growth and human infections. Blue shade indicates Rho-independent terminator in PA1414. g, Colony biofilm growth of ΔsicX harbouring different sicX mutations under anaerobic conditions. n = 4 independent experiments. h, Comparative proteomic study identifies the targets of SicX under both static and anaerobic conditions. i, β-galactosidase assay evaluating the translational control of SicX on ubiUVT under anaerobic conditions (n ≥ 4). j, β-galactosidase assay evaluating the transcription of ubiUVT in the absence of SicX or Anr under static conditions (n ≥ 8). k, Quantification of anaerobic UQ9 synthesis in different strains (n = 4). l, A model of dual regulation of ubiUVT expression by Anr and SicX. Error bars represent standard deviation from the mean. Significant differences (compared to the WT) are indicated with asterisks (*P < 0.05; **P < 0.01; ***P < 0.001; ****P < 0.0001; two-tailed Mann–Whitney test)./p>108 colony-forming units (CFUs) g−1; Fig. 3c). However, among mice carrying a high wound burden (>108 CFUs g−1), ΔsicX caused more systemic infection (12 out of 15) compared to WT (2 out of 11), indicating that dissemination did not solely depend on the wound burden (two-tailed Fisher’s exact test, P = 0.0043; Fig. 3c). Moreover, these observations are not due to differential fitness of WT and ΔsicX in spleens. This was demonstrated using an acute skin infection model in which systemic infection occurs shortly after subcutaneous injection into the mouse inner thigh. In this model, WT and ΔsicX exhibited similar colonization and growth in spleens (Extended Data Fig. 6). Taken together, our data indicate that SicX is a key player in P. aeruginosa chronic infection, the high expression of which promotes chronic localized infection./p>90% and query coverage values of >90% were retained for further analysis. Sequences of sicX and ubiUVT orthologues were aligned using MUSCLE43. To analyse the sequence conservation of sicX and ubiUVT orthologues, we first aligned sicX and ubiUVT orthologues using MUSCLE. Next, alignment ends were trimmed and gaps were removed, and percentages of orthologue sequences that are identical to sicX and ubiUVT queries were calculated at each nucleotide position in R. To create Extended Data Fig. 4b,c, the alignments were visualized in Jalview44 using the default nucleotide colour scheme./p>